微信扫码或点击右上角...分享

如何评估共聚焦光学截面厚度

共聚焦显微镜用于光学切片比较厚的样本。最直接的问题是:1. 什么是“比较厚的样本”;2. 光学切片到底有多厚?这两个问题在一定程度上是相关的,即假设一份厚样本至少比光学切片厚10倍。

生物样本的厚度可以从10米(整只动物)到10纳米(电子显微镜的超薄切片制备)。由于共聚焦显微镜采用了入射光的方法,样本本身的尺寸可能有几厘米或更多,但表面下方的穿透深度取决于材料的不透明度和物镜的工作距离。这就限制了样本大小(z方向),只能考虑使用厚度最多为几毫米的样本。

光学切片的决定因素是衍射极限。根据各种不同的参数,共聚焦扫描显微镜的真正光学截面厚度可达到约0.5毫米。标准共聚焦应用(如组织切片)当中常用的样本厚度为50 µm以内。

3D点扩散函数(PSF)和半高宽(FWHM)

图1:z方向上强度分布的半高宽(FWHM)用作光学切片性能的衡量指标之一

点扩散函数通过足够小的荧光小球生成,通过收集xz剖面图的强度来加以记录。上图显示了衍射图中心的强度分布(红色),并对50%数值之间的z方向距离进行测量(介于绿色线段之间)。

由光学系统产生的点(光斑)的图像称为“点扩散函数”(PSF)。点扩散函数描述了来自极小光斑的光在三维空间中的分布。这个衍射模型的中心是一个椭球形,影响着光学分辨率。径向尺寸决定横向分辨率,轴向尺寸决定聚焦深度,进而决定切片性能。

对于共聚焦截面切片,其目的在于只传输PSF的内核部分,即所谓的光学切片。实际上,针孔直径可控制从内核外传递的光量。因此,处在衍射模型大小范围内的光学切片很明显不会出现类似于面包片的锋利边缘,但仍然存在着同等扁平斜率的特征。连接强度曲线两侧50%强度的z距离称为“半高宽”(FWHM),而按照惯例,用于测量光学切片的厚度。光学切片的性能通常要通过聚焦在镜面上来进行测量,镜面用于模拟z方向上无限薄的结构。这种方法相对较容易实现并且可用于检查共聚焦显微镜系统的性能。从更为现实的角度进行考虑,z切片性能还可以通过荧光小球进行测量(见图1)。荧光小球能够在符合现实中荧光成像非相干条件下进行性能测量,因此满足了生物医学科学中的大多数共聚焦应用。反射光模式(镜面)中受衍射限制的光学切片与荧光模式的切片相比要薄得多。在比较文献中的图表时请务必牢记这一点。

控制光学切片厚度的参数

在理想条件下,可实现的最薄切片厚度仅取决于光学衍射的限制。

影响最大的是波长,主要按比例控制PSF的大小:波长越短,切片越薄。我们可以假设激发光的波长有限(而不是发射光的波长),因为照明区域外并无发射光。

第二个参数是物镜的光圈(数值孔径,NA):NA越高(信息收集的角度越宽),则光学切片越薄。此外,样本的折射率会影响轴向分辨率,进而影响到切片性能。图2给出了切片尺寸与这些参数的相互关系。

第三个参数是探测路径中的针孔直径,对于上面给出的公式可假设其为零。因此,该公式给出了荧光成像的最佳值,当然这只具有理论意义:直径为零的针孔不会生成明亮的图像!

图2:荧光样本中光学切片受衍射限制的最小厚度。针孔直径假设为零。真正共聚焦扫描系统中的半高宽(FWHM)。

光学切片厚度的评估关键

数值孔径NA对切片厚度有显著影响。PSF的径向扩展与NA成线性关系。因此,对于低NA物镜,PSF内核会拉得极长,而且切片会变得很厚。因此,绝大多数应用中都是用NA>1的浸润式物镜,其中xy和z维度的比例大致接近于2倍。按照经验,高NA物镜z部分分辨率大致为xy的两倍。

理论上的考虑有助于评估光学系统的性能。实际上,仪器和样本都会导致计算数值的偏差。必须仔细校准并操作仪器才能获得最佳性能。而样本本身就是分辨率的敌人,尤其是在更深层次成像时。因此,必须特别注意折射率匹配、适宜和恒定的温度以及正确的盖玻片选择。该理论给出的是经验法则,但样本和设置可能会带来显著的偏差——因为生物样本比晶体(或真空)更复杂,所以偏差通常也不可避免。

参考文献

1. Sheppard CJR: Scanning optical microscopy. In: Barer R and Cosslett VE (eds), Advances in Optical and Electron Microscopy 10 (1987). Academic Press, London UK.

2. Wilson T: Confocal Microscopy. Academic Press, London UK (1990).

3. Corle TR and Kino GS: Confocal Scanning Optical Microscopy and Related Imaging Systems. Academic Press, San Diego USA (1996).

4. Borlinghaus RT and Gröbler B.: Basic Principles and Applications of Confocal Laser Scanning Microscopy. In Isenberg G (ed): Modern Optics, Electronics, and High Precision Techniques in Cell Biology, 35–53 (1997). Springer Heidelberg.

5. Cox G: Optical Imaging Techniques in Cell Biology. Taylor & Francis, Boca Raton USA (2007).

STELLARIS

使用STELLARIS共聚焦平台时,我们对共聚焦显微镜进行重新设计以便让您更加接近真像。


提交后,我们将每月自动将您关注领域的行业快讯更新链接通过短信、邮件发送给你
如何评估共聚焦光学截面厚度 立即观看
RELATED PRODUCTS
相关产品
Viventis LS2 Live光片荧光显微镜结合了多视野和多位置光片成像技术,可照亮整个生命。 开始您的研究旅程,探索长时程深度成像,揭示生物系统的复杂细节和动态。
STELLARIS Cryo是一个共聚焦光学显微镜系统,可以帮助您针对感兴趣的区域进行定位以辅助冷冻电子断层扫描(CryoET)。STELLARIS 5 Cryo为您提供可靠的目标定位精准度, 同时还能提供您可以信赖的卓越性能,并提高实验效率。
徕卡显微系统采用独特的设计方法,使您可以在一个系统中进行共聚焦和光片成像, 实现柔和的单平面照明。 我们的数字光片系统(DLS)采用垂直设计,可以集成到 STELLARIS 5 和 STELLARIS 8 系统中,也可以作为两种系统的升级。 这样,您就可以受益于完整功能的共聚焦和易于使用的光片显微镜, 从而能够进行更多样化的研究。
当您需要研究传统荧光显微成像方法无法成像的结构时,通过STELLARIS CRS相干拉曼散射显微镜,您可以在工作流程中实现无标记化学成像,应对那些具有挑战性的研究问题。 在STELLARIS 8 CRS中,您可以使用不同模块对各种样本进行高速高分辨率成像: 受激拉曼散射(SRS)、相干反斯托克斯拉曼散射 (CARS) 、二次谐波成像(SHG)、双光子荧光和可见光共聚焦荧光。
RELATED ONLINE WEBINARS
网络课堂
2024年02月29日 10:08

本次课程聚焦于共聚焦技术的三个关键学习领域:

1、共聚焦基础和成像原理

深入了解共聚焦技术的基础知识和成像原理,揭开科技背后的神秘面纱。

2、 共聚焦成像的常见问题以及优化方案

探讨在共聚焦成像过程中可能遇到的常见问题,并分享解决方案,助你优化实验和应用。

3、 共聚焦显微镜的几项小众应用

发现共聚焦显微镜的一些令人惊叹的小众应用,拓宽你对这一技术的认知边界。


wechat
欢迎扫码关注徕卡官方微信,更多显微技巧,行业资讯尽在掌握
close